病原体基因溯源数据中心,给您提供权威的行业数据
分类
sampling
试剂盒
无专用试剂盒(核心耗材:CsCl、蔗糖、OptiPrep、超速离心管)
货号
OptiPrep(Sigma D1556)
样本类型
病毒培养上清、粪便滤液、污水浓缩液
预计时间
~4–6 h(6–12 样本/批,过夜平衡梯度另计)
sampling

超速离心与密度梯度离心——病毒颗粒浓缩与纯化标准流程

方法定义:利用病毒颗粒与宿主杂质的密度差异,在超速离心形成的 CsCl、蔗糖或碘克沙醇梯度中分离完整病毒,颗粒富集于 1.3–1.4 g/cm³ 区间。适用于培养上清、粪便滤液、污水等样本的病毒浓缩纯化,是宏基因组测序前的关键预处理,常用于腹泻病毒(如轮状病毒)暴发株的全基因组溯源。

原理

病毒颗粒大多 20–200 nm,跟细胞碎片、外泌体、游离核酸挤在一起。要做病毒溯源测序,先得把完整颗粒分出来,不然宿主背景会把有效数据冲淡。超速离心干的就是这件事:几万到几十万 × g 的离心力,让不同密度、不同大小的颗粒各就各位。

差速离心按大小沉降,先低速甩掉细胞残渣,再高速把病毒压成沉淀。密度梯度离心按浮力密度分层,病毒停在 1.3–1.4 g/cm³ 的窄区间。轮状病毒完整(三层)颗粒(TLP)约 1.36 g/cm³,脱壳后的双层颗粒(DLP)约 1.38 g/cm³,跟蛋白碎片(1.3 以下)拉得开。CsCl 梯度里病毒聚成一条肉眼可见的乳白带,就它了。比 PEG 沉淀慢,但去背景干净,下游建库省心。它在溯源里是样本端最关键的质量控制环节,用法见轮状病毒 G9P[8] 溯源案例。

步骤

1. 澄清除菌

样本先低速离心,2,000–10,000 × g、10–30 分钟、4°C,取上清。粪便和污水这类脏样本再过 0.45 μm 或 0.8 μm 滤膜,挡掉细菌碎屑。加 DNase I/RNase A 消化游离核酸,保证后面测的是颗粒内基因组。

2. 浓缩(可选)

体积大就先浓缩。PEG 8000 沉淀或 100 kDa 超滤管都能把体积压到 1–2 mL。培养上清滴度高、体积小,可以直接进梯度。

3. 铺梯度

CsCl 配 1.2、1.4、1.6 g/mL 三层,注射器从高密度到低密度慢慢铺进超速离心管。最上层加样本。蔗糖路线铺 20–60% 线性梯度。经典流程参考 Thurber 的病毒宏基因组制备方案。

4. 超速离心

摆桶转子,100,000–200,000 × g,4°C。CsCl 阶梯梯度 2–4 小时出带,自形成梯度要过夜(16–18 小时)才平衡。轮状病毒带出现在 1.36–1.38 g/cm³ 区间,肉眼可辨。

5. 分带与脱盐

停稳后别急刹车。侧壁穿刺或管底穿洞,按 0.5–1 mL 分批收集,取病毒带。CsCl 会抑制下游酶反应,收集液稀释后用超滤管换液,或再离心一次把病毒压成沉淀。没别的。

关键试剂与条件

试剂/耗材规格用量作用
CsCl分子生物学级配 1.2/1.4/1.6 g/mL 三层梯度等密度条带介质,病毒停在 1.3–1.4 g/cm³
蔗糖20–60% (w/v)10–20 mL/管速率区带梯度或垫层,适合保活病毒
OptiPrep(碘克沙醇)60% (w/v)稀释成 10–40% 梯度低渗惰性介质,包膜病毒回收更好
滤膜0.45/0.8 μm PES1 支/样本去细菌与碎屑,压宿主背景
DNase I/RNase A分子生物学级1–2 U/μL消化游离核酸,只留颗粒内基因组

FAQ

蔗糖梯度与 CsCl 梯度怎么选?

要保感染性(后续接培养或中和实验)用蔗糖;只做核酸测序用 CsCl,条带更锐、收率更稳。

超速离心与 PEG 沉淀浓缩怎么选?

样本体积大、设备紧张用 PEG;样本宝贵、要干净颗粒用超速离心。40,000 × g 的高速离心机也能跑 CsCl 梯度,不一定非超离机不可。

为什么测序前用 CsCl 而不是碘克沙醇?

CsCl 便宜、梯度锐、病毒带窄,核酸损失小。碘克沙醇低渗不伤病毒,但分辨率略差、价格高,留给要活病毒的实验。

参考文献

  1. Brakke MK. Density gradient centrifugation: a new separation technique. Journal of the American Chemical Society. 1951;73(4):1847-1848. DOI: 10.1021/ja01148a508
  2. Chen D, Ramig RF. Determinants of rotavirus stability and density during CsCl purification. Virology. 1992;186(1):228-237. DOI: 10.1016/0042-6822(92)90077-3
  3. Thurber RV, Haynes M, Breitbart M, Wegley L, Rohwer F. Laboratory procedures to generate viral metagenomes. Nature Protocols. 2009;4(4):470-483. DOI: 10.1038/nprot.2009.10
  4. Conceição-Neto N, Zeller M, Lefrère H, et al. Modular approach to customise sample preparation procedures for viral metagenomics: a reproducible protocol for virome analysis. Scientific Reports. 2015;5:16532. DOI: 10.1038/srep16532