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分类
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试剂盒
WarmStart LAMP Kit (DNA & RNA)(NEB)
货号
E1700
样本类型
鼻咽拭子粗裂解液、提取的病毒 RNA、病毒培养上清
预计时间
~40 min(8 样本)
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RT-LAMP环介导等温扩增——无需热循环仪的病毒核酸快速检测流程

方法定义:RT-LAMP 利用 Bst 聚合酶的链置换活性,在 60~65 ℃ 恒温下用 4~6 条引物对病毒 RNA 一步完成逆转录与扩增,20~40 分钟即可荧光或肉眼判读,无需热循环仪。适用于鼻咽拭子、病毒培养物等样本的现场快筛,暴发点初筛阳性后送测序定谱系,是病毒溯源「先筛后测」链条的前端方法。

一、原理

RT-PCR 做病毒核酸快检,绕不开热循环仪和两小时上下的升温降温循环。RT-LAMP 解决的就是这个:整管反应放在 60~65 ℃ 的恒温环境里,20~40 分钟出结果。水浴锅、加热块、车载保温箱都能干。

核心逻辑有两点。一是 Bst 聚合酶有强链置换活性,不需要高温变性来解链。扩增时它边延伸边把前面的双链顶开。二是引物体系识别靶序列上 6~8 个区域,扩增产物自己折叠成哑铃状结构,又充当下一轮循环的模板,滚动放大。一句话说清它跟 RT-PCR 的差别。RT-PCR 靠变温循环扩增,RT-LAMP 靠链置换在恒温下滚动扩增。体系里加入逆转录酶,RNA 病毒的反转录和扩增就在同一个管子里一步完成。

在溯源链条里,RT-LAMP 的定位是前端快筛。暴发点、低资源地区的阳性初判靠它,阳性样本再送 Sanger 或 NGS 测序定谱系。这套「先筛后测」的打法,在 SARS-CoV-2 溯源筛查中的应用 里体现得最典型。

二、步骤

1. 引物设计

选病毒基因组的保守区段做靶标,比如 SARS-CoV-2 的 N、M 或 ORF1ab 区域。用 PrimerExplorer 或 NEB LAMP Primer Design Tool 设计 6 条引物:外引物 F3/B3、内引物 FIP/BIP、环引物 LF/LB。引物务必错开变异热点位点,免得某个变异株漏检。

2. 配反应体系

25 μL 体系:WarmStart LAMP 2X Master Mix 取 12.5 μL,它已经把 Bst 2.0 WarmStart 聚合酶和 WarmStart RTx 逆转录酶配好了。再加引物混合液、荧光染料、模板 RNA,补水到 25 μL。WarmStart 技术让酶在室温不干活,开盖配样时不容易非特异扩增。

3. 恒温扩增

65 ℃ 孵育 20~40 分钟。没有荧光仪就用加热块或水浴,结束后再判读;有实时荧光仪就边扩增边看曲线。

4. 结果判读

三种读法任选:荧光曲线起峰且起峰时间早于阈值、浊度上升(焦磷酸镁沉淀)、酚红 pH 指示剂由粉红变黄。每批带上阳性对照和 NTC。NTC 起峰说明有污染或错扩增,整批重做。

5. 阳性样本送测序溯源

阳性管里的扩增产物不用再富集。直接 Sanger 测序看关键突变位点,或转入 NGS 流程做全基因组定谱系。2020 年 Dao Thi 团队的做法就是比色 RT-LAMP 初筛、LAMP 产物测序复核。快筛和溯源,就这么接上了。

三、关键参数

试剂/条件规格用量(25 μL 体系)作用
WarmStart LAMP 2X Master Mix2×(Bst 2.0 + RTx)12.5 μL链置换扩增 + 逆转录
FIP/BIP 内引物10× 工作液终浓度 1.6 μM启动哑铃结构形成
F3/B3 外引物10× 工作液终浓度 0.2 μM起始链置换
LF/LB 环引物10× 工作液终浓度 0.4 μM加速扩增,缩短出峰时间
LAMP 荧光染料50×0.5 μL实时荧光监测
模板 RNA提取 RNA 或拭子粗裂解液2~5 μL检测靶标
反应温度 / 时间65 ℃20~40 min等温扩增窗口

四、FAQ

RT-LAMP 和 RT-qPCR 怎么选?

现场快筛、设备受限、要 1 小时内出结果,选 RT-LAMP;要做定量、出合规检测报告,选 RT-qPCR。两者常搭配:LAMP 初筛,qPCR 复核。

为什么用 Bst 聚合酶而不是 Taq?

Taq 没有链置换活性,必须靠反复升温变性来解链。Bst 自带链置换,恒温下就能滚动扩增,这是 LAMP 不用热循环仪的根子。

6 条引物和 5 条引物体系怎么选?

6 条更快更灵敏,错扩增引起的假阳性风险也更高。5 条牺牲一点速度换特异性。大批量筛查、对假阳性敏感的场景选 5 条。没别的。

参考文献

  1. Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, et al. Loop-mediated isothermal amplification of DNA. Nucleic Acids Res. 2000;28(12):e63. DOI: 10.1093/nar/28.12.e63
  2. Nagamine K, Hase T, Notomi T. Accelerated reaction by loop-mediated isothermal amplification using loop primers. Mol Cell Probes. 2002;16(3):223-229. DOI: 10.1006/mcpr.2002.0415
  3. Dao Thi VL, Herbst K, Boerner K, et al. A colorimetric RT-LAMP assay and LAMP-sequencing for detecting SARS-CoV-2 RNA in clinical samples. Sci Transl Med. 2020;12(556):eabc7075. DOI: 10.1126/scitranslmed.abc7075
  4. Thai HTC, Le MQ, Vuong CD, et al. Development and evaluation of a novel loop-mediated isothermal amplification method for rapid detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus. J Clin Microbiol. 2004;42(5):1956-1961. DOI: 10.1128/JCM.42.5.1956-1961.2004