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分类
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试剂盒
Twist Comprehensive Viral Research Panel
货号
103545(2反应)/ 103547(12反应)/ 103548(96反应)
样本类型
临床样本总核酸提取物(血清/血浆/鼻咽拭子/组织匀浆)、Illumina测序文库
预计时间
~24 h(含过夜杂交16–18 h,8–16样本/反应)
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病毒探针杂交捕获富集——液相杂交靶向病毒序列富集与测序

方法定义:病毒探针杂交捕获富集利用生物素标记寡核苷酸探针在溶液体系中与病毒核酸序列特异性结合,再通过链霉亲和素磁珠分离靶标片段,实现病毒序列的高效富集。相比常规宏基因组测序,病毒reads比例可提升100–10000倍,检出限与qPCR相当。适用于临床低病毒载量样本(血清、拭子、组织)、新发病毒发现、One Health跨宿主病毒监测等场景。在儿童不明原因肝炎暴发中成功鉴定AAV2,是病毒溯源「从零到全基因组」的关键桥梁方法。

原理

临床样本里的病毒核酸通常只占核酸总量的万分之一不到。直接拿去做宏基因组测序,99%以上的 reads 都是宿主和背景微生物,病毒信号淹没在噪音里。病毒探针杂交捕获要解决的就是这个信噪比问题:用一套人工合成的生物素标记寡核苷酸探针,在溶液里和病毒序列特异性杂交,再用链霉亲和素磁珠把杂交上的片段「钓」出来。

核心逻辑是正向富集而非负向剔除。宿主核酸去除策略(核酸酶消化、rRNA去除)本质上是做减法——把不想看的东西清掉,但残留的背景依然可观,而且容易损失低丰度病毒序列。杂交捕获做的是加法:直接瞄准病毒序列,把目标从复杂背景里拉出来。VirCapSeq-VERT 系统用约200万条探针覆盖了207个脊椎动物病毒分类单元的全部编码区,能把病毒 reads 比例提升100到1万倍,检出限与实时荧光定量PCR相当。Twist Comprehensive Viral Research Panel 则用超过100万条120 bp探针覆盖3153个病毒物种,对10%序列差异仍能保持全长捕获。

与多重PCR扩增子法相比,杂交捕获的一大优势是容错——探针可以容忍高达10%-30%的序列错配。所以即使目标病毒与参考序列存在相当差异,仍然能抓到。这在溯源场景里尤其关键:新发病毒的基因组往往和已知参考差距不小。在儿童不明原因肝炎暴发溯源中,研究人员用泛病毒探针组从患者样本里成功鉴定出AAV2——这是多重PCR和常规mNGS都做不到的。

步骤

1. 测序文库制备

从样本中提取总核酸,DNA和RNA同时提取。若是RNA病毒,需先将RNA逆转录为双链cDNA。然后用商品化建库试剂盒(如Twist Total Nucleic Acids Library Preparation Kit或QIAseq FX DNA Library Kit)对核酸进行片段化、末端修复、加A尾、接头连接。连接产物经磁珠纯化后进行index PCR扩增,得到带样本条码的Illumina测序文库。文库用Qubit和Bioanalyzer定量质检,确保浓度≥25 ng/μL、片段大小在250–450 bp范围。

2. 文库池化与封闭

取8–16个文库等量混合,每个文库投入量按总质量1 μg除以样本数计算。混合后的文库pool中加入封闭试剂——COT DNA阻断重复序列、鲑精DNA做通用封闭背景、xGen Universal Blockers阻断Illumina接头之间的交叉杂交。加完后用Ampure XP磁珠浓缩,最后用10–15 μL无核酸酶水重悬。

3. 液相杂交

将浓缩后的文库pool与杂交缓冲液、病毒探针混合,总体积控制在12–20 μL。探针用量通常为2–4 μL/反应。混合物在PCR仪中65°C孵育16–18小时(过夜)。这是最关键的一步——杂交温度和时间的任何偏差都会影响捕获效率和特异性。

4. 链霉亲和素磁珠捕获与洗涤

杂交完成后,加入预先用结合缓冲液洗涤过两次的链霉亲和素磁珠(每反应100 μL),室温旋转孵育30分钟。探针上的生物素与磁珠上的链霉亲和素强力结合。随后用65°C预热的洗涤缓冲液洗磁珠3–4次,每次5分钟,去除非特异性结合的片段。最后用20 μL无核酸酶水重悬磁珠。

5. 捕获后扩增与测序

以磁珠上捕获到的DNA为模板,用Illumina通用引物进行10–14轮PCR扩增。扩增产物用1.0× Ampure XP磁珠纯化,Qubit定量,Bioanalyzer质检。文库摩尔浓度和片段分布确认无误后,在Illumina平台上机测序(通常PE150,每样本建议5–10M reads)。下机数据用Kraken2或One Codex平台进行病毒分类注释。

参数选择建议

参数推荐值说明
杂交温度65°C标准液相杂交温度,偏差超过±1°C会显著影响捕获效率
杂交时间16–18 h(过夜)少于12 h会降低低丰度靶标的捕获灵敏度
文库池容量8–16个/反应高病毒载量样本建议单独捕获,避免「抢占」探针资源
探针投入量2–4 μL/反应探针过量确保杂交充分;商业panel按说明书推荐体积
洗涤温度65°C高温洗涤去除不完全匹配的非特异性杂交片段
捕获后PCR循环数10–14轮循环过多导致PCR重复率升高和GC偏向;过少则文库浓度不足上机
建议测序深度5–10M reads/样本捕获后文库病毒比例通常在20%–80%,此深度足以覆盖目标基因组
探针错配容限10%–30%取决于探针长度(80–120 bp探针容错更高),超出此范围捕获效率急剧下降

FAQ

杂交捕获和多重PCR扩增子法怎么选?

如果目标病毒已知且保守区域明确(如流感HA/NA、SARS-CoV-2 Spike),用多重PCR更快更便宜,整合到现有qPCR工作流也方便。但如果面对的是新发或未知病毒、临床不明原因感染、或者需要全基因组覆盖而非特定区域,选杂交捕获——它的探针错配容限让它在溯源新病毒时远胜PCR。价格上,多重PCR单样本$5–15,杂交捕获单样本$40–80(含文库制备),但捕获法能一次扫几千种病毒。

为什么用液相杂交而不是固相芯片杂交?

固相芯片杂交(on-array capture)十多年前就被液相方案取代了。液相杂交的动力学更快——探针和靶标在溶液里三维扩散,结合效率远高于探针固定在芯片表面的二维扩散。液相体系也更容易规模化:一个1.5 mL管就能跑8–16个样本的混合pool,芯片方案完全做不到这个通量。

Twist Comprehensive Viral Research Panel和VirCapSeq-VERT怎么选?

VirCapSeq-VERT是哥伦比亚大学2015年开发的先驱系统,探针覆盖207个病毒分类单元,用NimbleGen芯片合成,但目前已不再作为商业产品提供。Twist Comprehensive Viral Research Panel覆盖3153个病毒物种(含人畜共患病毒),探针为120 bp、硅基合成,搭配One Codex云平台做一键分析。做临床病毒组学研究或One Health跨宿主监测,优先选Twist方案。如果只需要覆盖特定病原体且有条件自行合成探针,也可以按CATCH算法定制设计探针组。

参考文献

  1. Briese T, Kapoor A, Mishra N, Jain K, Kumar A, Jabado OJ, Lipkin WI. Virome Capture Sequencing Enables Sensitive Viral Diagnosis and Comprehensive Virome Analysis. mBio. 2015;6(5):e01491-15. DOI: 10.1128/mBio.01491-15
  2. Wylie TN, Wylie KM, Herter BN, Storch GA. Enhanced virome sequencing using targeted sequence capture. Genome Research. 2015;25(12):1910-1920. DOI: 10.1101/gr.191049.115
  3. Metsky HC, Siddle KJ, Gladden-Young A, et al. Capturing sequence diversity in metagenomes with comprehensive and scalable probe design. Nature Biotechnology. 2019;37(2):160-168. DOI: 10.1038/s41587-018-0006-x
  4. Mao W, Wang J, Li T, et al. Hybrid Capture-Based Sequencing Enables Highly Sensitive Zoonotic Virus Detection Within the One Health Framework. Pathogens. 2025;14(3):264. DOI: 10.3390/pathogens14030264