原理
临床样本里的病毒核酸通常只占核酸总量的万分之一不到。直接拿去做宏基因组测序,99%以上的 reads 都是宿主和背景微生物,病毒信号淹没在噪音里。病毒探针杂交捕获要解决的就是这个信噪比问题:用一套人工合成的生物素标记寡核苷酸探针,在溶液里和病毒序列特异性杂交,再用链霉亲和素磁珠把杂交上的片段「钓」出来。
核心逻辑是正向富集而非负向剔除。宿主核酸去除策略(核酸酶消化、rRNA去除)本质上是做减法——把不想看的东西清掉,但残留的背景依然可观,而且容易损失低丰度病毒序列。杂交捕获做的是加法:直接瞄准病毒序列,把目标从复杂背景里拉出来。VirCapSeq-VERT 系统用约200万条探针覆盖了207个脊椎动物病毒分类单元的全部编码区,能把病毒 reads 比例提升100到1万倍,检出限与实时荧光定量PCR相当。Twist Comprehensive Viral Research Panel 则用超过100万条120 bp探针覆盖3153个病毒物种,对10%序列差异仍能保持全长捕获。
与多重PCR扩增子法相比,杂交捕获的一大优势是容错——探针可以容忍高达10%-30%的序列错配。所以即使目标病毒与参考序列存在相当差异,仍然能抓到。这在溯源场景里尤其关键:新发病毒的基因组往往和已知参考差距不小。在儿童不明原因肝炎暴发溯源中,研究人员用泛病毒探针组从患者样本里成功鉴定出AAV2——这是多重PCR和常规mNGS都做不到的。
步骤
1. 测序文库制备
从样本中提取总核酸,DNA和RNA同时提取。若是RNA病毒,需先将RNA逆转录为双链cDNA。然后用商品化建库试剂盒(如Twist Total Nucleic Acids Library Preparation Kit或QIAseq FX DNA Library Kit)对核酸进行片段化、末端修复、加A尾、接头连接。连接产物经磁珠纯化后进行index PCR扩增,得到带样本条码的Illumina测序文库。文库用Qubit和Bioanalyzer定量质检,确保浓度≥25 ng/μL、片段大小在250–450 bp范围。
2. 文库池化与封闭
取8–16个文库等量混合,每个文库投入量按总质量1 μg除以样本数计算。混合后的文库pool中加入封闭试剂——COT DNA阻断重复序列、鲑精DNA做通用封闭背景、xGen Universal Blockers阻断Illumina接头之间的交叉杂交。加完后用Ampure XP磁珠浓缩,最后用10–15 μL无核酸酶水重悬。
3. 液相杂交
将浓缩后的文库pool与杂交缓冲液、病毒探针混合,总体积控制在12–20 μL。探针用量通常为2–4 μL/反应。混合物在PCR仪中65°C孵育16–18小时(过夜)。这是最关键的一步——杂交温度和时间的任何偏差都会影响捕获效率和特异性。
4. 链霉亲和素磁珠捕获与洗涤
杂交完成后,加入预先用结合缓冲液洗涤过两次的链霉亲和素磁珠(每反应100 μL),室温旋转孵育30分钟。探针上的生物素与磁珠上的链霉亲和素强力结合。随后用65°C预热的洗涤缓冲液洗磁珠3–4次,每次5分钟,去除非特异性结合的片段。最后用20 μL无核酸酶水重悬磁珠。
5. 捕获后扩增与测序
以磁珠上捕获到的DNA为模板,用Illumina通用引物进行10–14轮PCR扩增。扩增产物用1.0× Ampure XP磁珠纯化,Qubit定量,Bioanalyzer质检。文库摩尔浓度和片段分布确认无误后,在Illumina平台上机测序(通常PE150,每样本建议5–10M reads)。下机数据用Kraken2或One Codex平台进行病毒分类注释。
参数选择建议
| 参数 | 推荐值 | 说明 |
|---|---|---|
| 杂交温度 | 65°C | 标准液相杂交温度,偏差超过±1°C会显著影响捕获效率 |
| 杂交时间 | 16–18 h(过夜) | 少于12 h会降低低丰度靶标的捕获灵敏度 |
| 文库池容量 | 8–16个/反应 | 高病毒载量样本建议单独捕获,避免「抢占」探针资源 |
| 探针投入量 | 2–4 μL/反应 | 探针过量确保杂交充分;商业panel按说明书推荐体积 |
| 洗涤温度 | 65°C | 高温洗涤去除不完全匹配的非特异性杂交片段 |
| 捕获后PCR循环数 | 10–14轮 | 循环过多导致PCR重复率升高和GC偏向;过少则文库浓度不足上机 |
| 建议测序深度 | 5–10M reads/样本 | 捕获后文库病毒比例通常在20%–80%,此深度足以覆盖目标基因组 |
| 探针错配容限 | 10%–30% | 取决于探针长度(80–120 bp探针容错更高),超出此范围捕获效率急剧下降 |
FAQ
杂交捕获和多重PCR扩增子法怎么选?
如果目标病毒已知且保守区域明确(如流感HA/NA、SARS-CoV-2 Spike),用多重PCR更快更便宜,整合到现有qPCR工作流也方便。但如果面对的是新发或未知病毒、临床不明原因感染、或者需要全基因组覆盖而非特定区域,选杂交捕获——它的探针错配容限让它在溯源新病毒时远胜PCR。价格上,多重PCR单样本$5–15,杂交捕获单样本$40–80(含文库制备),但捕获法能一次扫几千种病毒。
为什么用液相杂交而不是固相芯片杂交?
固相芯片杂交(on-array capture)十多年前就被液相方案取代了。液相杂交的动力学更快——探针和靶标在溶液里三维扩散,结合效率远高于探针固定在芯片表面的二维扩散。液相体系也更容易规模化:一个1.5 mL管就能跑8–16个样本的混合pool,芯片方案完全做不到这个通量。
Twist Comprehensive Viral Research Panel和VirCapSeq-VERT怎么选?
VirCapSeq-VERT是哥伦比亚大学2015年开发的先驱系统,探针覆盖207个病毒分类单元,用NimbleGen芯片合成,但目前已不再作为商业产品提供。Twist Comprehensive Viral Research Panel覆盖3153个病毒物种(含人畜共患病毒),探针为120 bp、硅基合成,搭配One Codex云平台做一键分析。做临床病毒组学研究或One Health跨宿主监测,优先选Twist方案。如果只需要覆盖特定病原体且有条件自行合成探针,也可以按CATCH算法定制设计探针组。
参考文献
- Briese T, Kapoor A, Mishra N, Jain K, Kumar A, Jabado OJ, Lipkin WI. Virome Capture Sequencing Enables Sensitive Viral Diagnosis and Comprehensive Virome Analysis. mBio. 2015;6(5):e01491-15. DOI: 10.1128/mBio.01491-15
- Wylie TN, Wylie KM, Herter BN, Storch GA. Enhanced virome sequencing using targeted sequence capture. Genome Research. 2015;25(12):1910-1920. DOI: 10.1101/gr.191049.115
- Metsky HC, Siddle KJ, Gladden-Young A, et al. Capturing sequence diversity in metagenomes with comprehensive and scalable probe design. Nature Biotechnology. 2019;37(2):160-168. DOI: 10.1038/s41587-018-0006-x
- Mao W, Wang J, Li T, et al. Hybrid Capture-Based Sequencing Enables Highly Sensitive Zoonotic Virus Detection Within the One Health Framework. Pathogens. 2025;14(3):264. DOI: 10.3390/pathogens14030264
